SYA133 貝氏柯克斯體單重?zé)晒釶CR檢測試

貝氏柯克斯體單重?zé)晒釶CR檢測試由北京百奧萊博供貨并提供相關(guān)技術(shù)服務(wù)支持,本品用于生化實(shí)驗(yàn)研究等領(lǐng)域,本品質(zhì)量穩(wěn)定,價(jià)位合理,需要貝氏柯克斯體單重?zé)晒釶CR檢測試等細(xì)菌PCR檢測試劑盒產(chǎn)品的客戶,請到我公司官網(wǎng)聯(lián)系我們。...
特別提示:包括貝氏柯克斯體單重?zé)晒釶CR檢測試劑盒在內(nèi),本公司的所有產(chǎn)品僅可用于科研實(shí)驗(yàn),嚴(yán)禁用于臨床醫(yī)療及其他非科研用途!
產(chǎn)品名稱:貝氏柯克斯體單重?zé)晒釶CR檢測試劑盒
產(chǎn)品貨號:SYA133
產(chǎn)品規(guī)格:48次/盒
本試劑盒適合于檢測全血等樣本中的貝氏柯克斯體通用,用于貝氏柯克斯體通用感染的輔助診斷,其檢測結(jié)果僅供參考。
本試劑盒用一對貝氏柯克斯體通用特異性引物,結(jié)合一條特異性探針,用熒光PCR技術(shù)對貝氏柯克斯體通用的核酸進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學(xué)診斷。
試劑盒組成:
| 組分 | 數(shù)量 | 規(guī)格 |
| 貝氏柯克斯體反應(yīng)液(qPCR MIX) | 1管 | 672μL/管 |
| DNA抽提液(DNA Extraction) | 2管 | 1.5mL/管 |
| 酶混合物(Enzymes MIX) | 1管 | 48μL/管 |
| 陰性對照(NTC) | 1管 | 50μL/管 |
| 貝氏柯克斯體陽性對照(PTC) | 1管 | 50μL/管 |
儲存條件:-20℃以下,有效期6個(gè)月。
使用方法:
一、樣品采集:
用注射器取血5mL至EDTA-2Na抗凝管,取抗凝血下層血細(xì)胞50μL,加入100μL雙蒸水吹勻。
二、DNA提取:
可采用PCR試劑盒配備的DNA抽提液,按以下說明進(jìn)行DNA核酸的粗提。也可采購北京百奧萊博科技有限公司生產(chǎn)的DNA提取試劑盒(過柱法-熒光配套)或其他合適的商業(yè)化產(chǎn)品,并按照相應(yīng)試劑盒說明進(jìn)行操作。
對上述處理好的樣本加入等體積核酸提取液(固體標(biāo)本加入50μL核酸提取液),100℃恒溫處理10min,13000rpm離心5min,取上清液轉(zhuǎn)移至新的1.5mL EP管,-20℃保存;
注:陽性對照和陰性對照為已經(jīng)抽提好的核酸(無需提取),直接取5μL加入到反應(yīng)體系中即可。由于陽性對照濃度較高,建議zuì后在樣品制備區(qū)域加入陽性對照。
三、檢測步驟:
1.試劑的準(zhǔn)備
從試劑盒中取出熒光PCR反應(yīng)液(qPCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX),冰上融化并振蕩混勻后,10000rpm離心10s。
設(shè)所需要的PCR反應(yīng)管管數(shù)為N(N=樣本數(shù)+1管陰性對照+1管陽性對照),每個(gè)測試反應(yīng)體系配制如下表:
| 試劑 | 每個(gè)反應(yīng)加入的量 | N個(gè)反應(yīng)加入的量 |
| 熒光PCR反應(yīng)液 | 14μL | N×14μL |
| 酶混合物 | 1 μL | N×1μL |
| 總量 | 15 μL | N×15μL |
計(jì)算好各試劑的使用量,加入一適當(dāng)體積潔凈離心管中,充分混勻,10000rpm離心10s,向設(shè)定的N個(gè)PCR反應(yīng)管中分別加入15μL熒光PCR反應(yīng)液,向每管中加入處理后樣品/陰性對照(NTC)/陽性對照(PTC)5μL,10000rpm瞬時(shí)離心10秒。
2.qPCR反應(yīng)條件
將各反應(yīng)管放入實(shí)時(shí)熒光PCR儀器的反應(yīng)槽內(nèi)。推薦循環(huán)條件:
| 1循環(huán) | 50℃ for 2 min預(yù)變性 | 1循環(huán) | 95℃ for 10 minPCR擴(kuò)增 | 40循環(huán) |
95℃ for 15 sec 60℃ for 60 sec |
在60℃延伸時(shí)收集熒光信號。報(bào)告基團(tuán):設(shè)置為FAM。淬滅基團(tuán):NONE,請勿選擇ROX參比熒光。
四、結(jié)果分析:
1.結(jié)果分析條件設(shè)定
直接讀取檢測結(jié)果。基線和閾值設(shè)定原則根據(jù)儀器噪聲情況進(jìn)行調(diào)整,以閾值線剛好超過正常陰性樣品擴(kuò)增曲線的zuì高點(diǎn)為準(zhǔn)。
2.試驗(yàn)成立判定
?陰性對照:不應(yīng)產(chǎn)生任何的擴(kuò)增曲線。
?陽性對照:均產(chǎn)生擴(kuò)增曲線。
?以上條件應(yīng)同時(shí)滿足 ,否則,此次試驗(yàn)視為無效。
3.結(jié)果判定
?在試驗(yàn)成立的條件下,Ct值≤35的樣本為陽性,表明貝氏柯克斯體核酸陽性。
?Ct值顯示為無的樣本為陰性樣本,表明貝氏柯克斯體核酸陰性。
?如果Ct值>35,判為可疑樣品。對于可疑樣品,先看擴(kuò)增曲線。如果擴(kuò)增曲線為對數(shù)擴(kuò)增曲線,則為可疑陽性,否則判為陰性。
?對于可疑陽性樣品,重新抽提核酸,再次進(jìn)行貝氏柯克斯體 qPCR檢測。如果重復(fù)擴(kuò)增曲線為對數(shù)擴(kuò)增曲線,判為樣本陽性,表明貝氏柯克斯體核酸陽性;否則判為樣本陰性。
五、注意事項(xiàng):
?初次使用前請仔細(xì)閱讀說明書。并嚴(yán)格按照說明書步驟操作。
?所有使用的離心管zuì好高壓滅菌,而且必須不含DNA酶。
?PCR操作應(yīng)嚴(yán)格按照要求分區(qū)(試劑配制區(qū)、標(biāo)本處理區(qū)、PCR擴(kuò)增區(qū)等),防止實(shí)驗(yàn)室污染。
?樣本提取、試劑配置、加樣需在不同區(qū)的超凈工作臺進(jìn)行,以免污染。
?試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對待,并按照衛(wèi)生部《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。
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本試劑盒適用于檢測頭部、乳腺、生殖器淋巴結(jié)、脾、懷孕后期或生產(chǎn)后早期的子宮、乳房組織、流產(chǎn)的胎兒組織、胎膜、陰道分泌物、精液、關(guān)節(jié)炎和水囊瘤液等樣本中的布氏桿菌(BS),用于布氏桿菌(BS)感染的輔助診斷,其檢測結(jié)果僅供臨床參考。
本試劑盒用一對布氏桿菌特異性引物,結(jié)合一條特異性探針,用熒光PCR技術(shù)對布氏桿菌核酸進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學(xué)診斷。
試劑盒組成:
| 組份 | 數(shù)量 | 規(guī)格 |
| 布氏桿菌反應(yīng)液(BS-qPCR MIX) | 1管 | 672μL/管 |
| DNA抽提液(DNA Extraction) | 2管 | 1.5mL/管 |
| 酶混合物(Enzymes MIX) | 1管 | 48μL/管 |
| 陰性對照(NTC) | 1管 | 50μL/管 |
| 布氏桿菌陽性對照(BS-PTC) | 1管 | 50μL/管 |
儲存條件:-20℃以下,有效期6個(gè)月。
使用方法:
一、樣品采集:死亡或撲殺動物,取頭部、乳腺、生殖器淋巴結(jié)、脾、懷孕后期或生產(chǎn)后早期的子宮、乳房組織、流產(chǎn)的胎兒組織、胎膜、陰道分泌物、精液、關(guān)節(jié)炎和水囊瘤液。
二、樣品處理:
?組織樣品:每份組織分別從3個(gè)不同的位置稱取樣品約1g,手術(shù)剪剪碎混勻后取0.05g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至1.5mL滅菌離心管中,8000rpm離心2min,取上清液100μL于1.5mL滅菌離心管中;
?陰道拭子樣品、精液、關(guān)節(jié)炎和水囊瘤液直接取100μL于1.5mL滅菌離心管中。
三、DNA提取:
可采用PCR試劑盒配備的DNA抽提液,按以下說明進(jìn)行DNA核酸的粗提。也可采購北京百奧萊博科技有限公司生產(chǎn)的DNA提取試劑盒(過柱法-熒光配套)或其他合適的商業(yè)化產(chǎn)品,并按照相應(yīng)試劑盒說明進(jìn)行操作。
對上述處理好的樣本加入40uL核酸提取液,100℃恒溫處理10min,13000rpm離心5min,取上清液轉(zhuǎn)移至新的1.5mL EP管,-20℃保存;
注:陽性對照和陰性對照為已經(jīng)抽提好的核酸(無需提取),直接取5μL加入到反應(yīng)體系中即可。由于陽性對照濃度較高,建議zuì后在樣品制備區(qū)域加入陽性對照。
四、檢測步驟:
1.試劑的準(zhǔn)備
從試劑盒中取出熒光PCR反應(yīng)液(BS-qPCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX),冰上融化并振蕩混勻后,10000rpm離心10s。
設(shè)所需要的PCR反應(yīng)管管數(shù)為N(N=樣本數(shù)+1管陰性對照+1管陽性對照),每個(gè)測試反應(yīng)體系配制如下表:
| 試劑 | 每個(gè)反應(yīng)加入的量 | N個(gè)反應(yīng)加入的量 |
| 熒光PCR反應(yīng)液 | 14μL | N×14μL |
| 酶液 | 1μL | N×1μL |
| 總量 | 15μL | N×15μL |
計(jì)算好各試劑的使用量,加入一適當(dāng)體積潔凈離心管中,充分混勻,10000rpm離心10s,向設(shè)定的N個(gè)PCR反應(yīng)管中分別加入15μL熒光PCR反應(yīng)液,向每管中加入處理后樣品/陰性對照(NTC)/陽性對照(BS-PTC)5μL,10000rpm瞬時(shí)離心10秒。
2.qPCR反應(yīng)條件
將各反應(yīng)管放入實(shí)時(shí)熒光PCR儀器的反應(yīng)槽內(nèi)。推薦循環(huán)條件:
| 1循環(huán) |
50℃ for 2 min | |
| 預(yù)變性 | 1循環(huán) | 95℃ for 10 min |
| PCR擴(kuò)增 | 40循環(huán) |
95℃ for 15 sec 60℃ for 60 sec |
在60℃延伸時(shí)收集熒光信號。報(bào)告基團(tuán):設(shè)置為FAM。淬滅基團(tuán):NONE,請勿選擇ROX參比熒光。
五、結(jié)果分析:
1.結(jié)果分析條件設(shè)定
直接讀取檢測結(jié)果。基線和閾值設(shè)定原則根據(jù)儀器噪聲情況進(jìn)行調(diào)整,以閾值線剛好超過正常陰性樣品擴(kuò)增曲線的zuì高點(diǎn)為準(zhǔn)。
2.試驗(yàn)成立判定
?陰性對照(NTC):不應(yīng)產(chǎn)生任何的擴(kuò)增曲線。
?陽性對照(BS-PTC):均產(chǎn)生擴(kuò)增曲線。
?以上條件應(yīng)同時(shí)滿足,否則,此次試驗(yàn)視為無效。
3.結(jié)果判定
?在試驗(yàn)成立的條件下,Ct值≤35的樣本為陽性,表明BS核酸陽性。
?Ct值顯示為無的樣本為陰性樣本,表明BS核酸陰性。
?如果35<Ct值,判為可疑樣品。對于可疑樣品,先看擴(kuò)增曲線。如果擴(kuò)增曲線為對數(shù)擴(kuò)增曲線,則為可疑陽性,否則判為陰性。
?對于可疑陽性樣品,重新抽提核酸,再次進(jìn)行BS qPCR檢測。如果重復(fù)擴(kuò)增曲線為對數(shù)擴(kuò)增曲線,判為樣本陽性,表明BS核酸陽性;否則判為樣本陰性。
六、注意事項(xiàng):
?初次使用前請仔細(xì)閱讀說明書。并嚴(yán)格按照說明書步驟操作。
?所有使用的離心管應(yīng)高壓滅菌,而且必須不含DNA酶。
?PCR操作應(yīng)嚴(yán)格按照要求分區(qū)(試劑配制區(qū)、標(biāo)本處理區(qū)、PCR擴(kuò)增區(qū)等),防止實(shí)驗(yàn)室污染。
?樣本提取、試劑配置、加樣需在不同區(qū)的超凈工作臺進(jìn)行,以免污染。
?試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對待,按照衛(wèi)生部《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。

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